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        目錄:北京易科泰生態技術有限公司>>植物類>>植物光合作用與生理生態>> TL200系列植物光合熱釋光測量系統

        植物光合熱釋光測量系統

        • 植物光合熱釋光測量系統
        參考價 面議
        具體成交價以合同協議為準
        參考價 面議
        具體成交價以合同協議為準
        • 品牌
        • 型號 TL200系列
        • 廠商性質 代理商
        • 所在地 北京市
        屬性

        >

        更新時間:2025-07-01 18:46:40瀏覽次數:3964評價

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        植物光合熱釋光測量系統是針對研究PSII能量水平結構而設計的。PSII反應中心光誘導電荷分離導致儲存了吸收光能的激發電子對的累積。加熱誘導這些激發電子對的重組,從而引發光釋放,并在一定溫度范圍內形成特異性熱釋光曲線。根據不同釋光曲線的形狀、峰位和峰值,可以研究分析關于特定激發電子對的能量穩定性及PSII反應中心功能等。

        植物光合熱釋光測量系統

        植物光合熱釋光測量系統是研究光合作用的強有力的工具,是研究PSII電子傳輸的有效探針,廣泛應用于除草劑對PSII的受體效應、QAQB穩定性、光合放氧復合物(OEC)穩定性及PSII總體完整性等,還用于光合突變個體的篩選等。

        是針對研究PSII能量水平結構而設計的。PSII反應中心光誘導電荷分離導致儲存了吸收光能的激發電子對的累積。加熱誘導這些激發電子對的重組,從而引發光釋放,并在一定溫度范圍內形成特異性熱釋光曲線。根據不同釋光曲線的形狀、峰位和峰值,可以研究分析關于特定激發電子對的能量穩定性及PSII反應中心功能等。TL200系列熱釋光測量儀的測量范圍為-90°C+190°C,使用范圍更寬,可以對低溫、高溫段熱釋光進行研究。

         

         

        應用領域

        1. 光合機理研究——捕光色素復合體,PSII反應中心,放氧復合物研究;PSII能級分析;原初反應階段的內在過程探測
        2. 植物脅迫生理的早期檢測與診斷
        3. 植物病蟲害相關研究
        4. 除草劑影響
        5. 對植物光合研究的*補充

         

        典型樣品   

        植物碎片

        各種微藻

        葉綠體懸浮液

        類囊體懸浮液

         

        工作原理

        熱釋光(Thermoluminescence,縮寫TL)是晶體受到輻射照射后,會產生自由電子,這些電子被晶格缺陷俘獲而積攢起來,在加熱過程中以光形式釋放出來。其基本的實驗過程是將葉片快速冷凍到某一溫度,之后給葉片一個足夠強,但時間盡量短(一般<5µs)的單翻轉光(single turn-over ?ash),用于誘導每個PSII反映中心發生僅一次的電荷分離;然后逐漸升溫,同時測量葉片放出的熱釋光,繪制TL譜帶。

        熱釋光研究中的一個主要工具是單次翻轉光閃,要求足夠強(光源強度高達 150 000 µmol(photons).m2.s1)和足夠短(典型 < 5 微秒)來誘導每一個PSII反應中心發生一次,且僅一次的電荷分離。光閃的飽和效果可以通過QB段的強度來檢查,它應該在*光閃后達到zui大,在2次光閃后不再增加。當前許多實驗中使用的氙燈光閃具有明顯缺陷——一個長的持續發光,或者閃光拖尾,這會在某些PSII反應中心中產生兩次的電荷分離(連擊)。雖然激光閃光能夠有效降低連擊,但不能消除。

        TL200系列熱釋光測量儀使用能量足夠強的LED光源,所釋放5-10µs的方波脈沖能夠飽和所有的PSII反應中心,其溫度控制單元可以在降溫后,再使樣品的溫度以0.1/sec 2/sec的速率線性增加。不同的閃光序列及樣品處理能夠使樣品處于不同的能量狀態,不同的溫度下釋放的光能源自光合機構的不同結構。分析釋光曲線的形狀、峰位和峰值,可以研究分析關于特定激發電子對的能量穩定性及PSII反應中心功能等。

         

        熱釋光與光合機構間關系

         

         

         TL200系列熱釋光測量儀三種型號的控溫方式與范圍

        具體型號

        控溫方式

        控溫范圍

        TL200/PMT標準版

        水冷單元——控溫模塊

        -25 +70

        TL300/HT高溫版

        水冷單元——高溫控制模塊

        -25 +190

        TL400/LT液氮版

        水冷單元——液氮制冷單元——控溫模塊

        -90 +70

         

        系統組成

        TL200系列熱釋光測量系統由3部分組成:多功能控制單元、溫度調節器控制單元及測量室

        多功能控制單元(Multipurpose Control Unit根據用戶定義方案或熱發光向導提供的實驗程序來執行實驗過程,有兩個輸入頻道,一個用于測量熱發光信號(TL信號),另一個用于測量溫度。 測量曲線以兩種格式顯示:時間/溫度和時間/TL信號,或溫度/TL信號。

        溫度調節器控制單元(Thermoregulator Control Unit可以在-90°C +190°C范圍內以0.1°C的精確度控制樣品的溫度。 系統前面板可以顯示實際的溫度,溫度調節可以通過手動或程序控制(軟件)來實現。有兩種工作模式:恒溫模式和溫度梯度模式,在恒溫模式下儀器將維持樣品在恒定的溫度,而在溫度梯度模式下,可以使樣品的溫度以0.1°C/sec 2°C/sec的速率線性變化。

        AC-88水冷單元可將系統溫度降低到4°C包含一個電子控制的抽水泵和內部可以儲水的制冷器,用于降低測量室的環境溫度。

        CryoFab液氮罐通過管路連接到測量室,通過電子控制的低溫輸出閥可以將系統溫度控制在 -20°C -90°C

        TFPE單元控制的輔助加熱模塊可以將系統溫度加熱到+190°C

        測量室(Measuring Chamber又包括四個關鍵組成部分:光源、 光電倍增器、A/D 轉換器、具有溫度控制器的樣品盤:

        1. 光源由8個超亮的發光二極管(λmax=630 nm)組成,發射的光閃強度高達150,000 µmol(photons). m2.s1以上,光閃持續時間zui長為150 µs(典型5-10us,光強和光閃持續時間通過軟件控制。
        2. 光電倍增器可以探測從300900nm范圍的光量子,從而測量熱發光信號和緩發熒光。光電倍增器包括自己的電源。
        3. A/D轉換器用于光電倍增器的電流放大、軟件控制增益和數字化,放大器的時間反應固定在50ms,以確定zui小取樣周期到100ms

         

        技術參數

        • 溫度范圍:

        TL200/PMT標準版:-25 +70

        TL 300/HT高溫版:-25 +190

        TL 400/LT液氮版:-90 +70

        • 控溫模式:恒溫;線性變化(0.1ºC/sec - 2ºC/sec
        • 過熱保護:提供
          環境光保護:提供
        • 控制模式:手動(恒溫);程序設定溫度曲線
        • 樣品盤:直徑½英寸鍍金銅盤
        • 測量樣品:藻類、藍細菌、葉綠體懸浮液,葉片碎片等
        • 光源:波長lmax=625nm,光源強度高達 150 000 µmol(photons). m2.s1以上
        • 探測系統:傳感器為可以通過軟件靈敏控制的光電倍增器,光譜響應為300nm-900nm,zui小取樣周期100ms,時間響應50ms,接通延遲100ms
        • 控制:用戶可通過語言自定義程序控制儀器測量過程
        • 通訊:USB
        • 軟件:FluorWin 3.6
        • 電源:90V-240V

        操作軟件與實驗結果

         

        典型應用

        上圖為源自擬南芥未冷凍葉片的熱釋光(M.Roman 1998)。實心符號:對照(a);空心符號:輕度脫水(b)。單閃(細線)產生75%S225%S1(只有S2S3產生熱釋光,S1無),雙閃(粗線)25%S275%S33閃(點線)25%S3a、對照植物。單閃后,熱釋光B段與S2QB-相*(B2,見表1)且可以被單因子擬合得很好。2次閃光后,則需要3個因子,S2QB-B1),S3QB-B2)和一個剩余因子(未顯示)。b、適度脫水的植物。B段下調,S3S2在更大程度上表明了類囊體腔內一個暗穩態的酸性pH45攝氏度段(余輝)源自S2/3QB中心中熱誘導的從基質還原劑向QB的電子傳遞,使它們發光:它的增加表明了一個強的同化勢能NADP+ATPDucruet 2003)。

        產地:歐洲

        參考文獻:(僅2011年發表的部分文獻,77篇中的14篇)

        • Thermoluminescence. PV Sane, et al, 2012. Photosynthesis
        • Analysis of S2QA-charge recombination with the Arrhenius, Eyring and Marcus theories. S Rantamäki, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology
        • Manganese limitation induces changes in the activity and in the organization of photosynthetic complexes in the cyanobacterium Synechocystis sp. strain PCC 6803. E Salomon, et al, 2011. Plant physiology
        • Inhibition of photosynthetic oxygen evolution and electron transfer from the quinone acceptor QA− to QB by iron deficiency. N Msilini, et al, 2011. Photosynthesis research
        • Chlorophyll fluorescence emission as a reporter on cold tolerance in Arabidopsis thaliana accessions. A Mishra, et al. Plant Signaling & Behavior, 2011
        • Characterization of photosystem II in transgenic tobacco plants with decreased iron superoxide dismutase. Y Zhang, et al, 2011. Biochimica et Biophysica Acta
        • Two functional sites of phosphatidylglycerol for regulation of reaction of plastoquinone Q< sub> B</sub> in photosystem II. S Itoh, et al, 2011. Biochimica et Biophysica Acta
        • Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese-Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry
        • Species-dependence of the redox potential of the primary quinone electron acceptor QA in photosystem II verified by spectroelectrochemistry. T Shibamoto, et al, 2010. FEBS letters
        • Flavodiiron proteins in oxygenic photosynthetic organisms: photoprotection of photosystem II by Flv2 and Flv4 in Synechocystis sp. PCC 6803. P Zhang, et al, 2009. PloS one
        • Comparative analysis of leaftype ferredoxinNADP+ oxidoreductase isoforms in Arabidopsis thaliana. M Lintala, et al, 2009. The Plant Journal
        • Psb28 protein is involved in the biogenesis of the photosystem II inner antenna CP47 (PsbB) in the cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803. M Dobáková, et al, 2009. Plant physiology
        • Functional complementation of the Arabidopsis thaliana psbo1 mutant phenotype with an N-terminally His6-tagged PsbO-1 protein in photosystem II. H Liu, et al, 2009. Biochimica et Biophysica Acta
        • Interaction of methylamine with extrinsic and intrinsic subunits of photosystem II. S Hamdani, et al, 2009. Biochimica et Biophysica Acta
        • Investigation of the low-affinity oxidation site for exogenous electron donors in the Mn-depleted photosystem II complexes. VN Kurashov, et al, 2009. Biochimica et Biophysica Acta
        • Changes in the photosynthetic reaction centre II in the diatom Phaeodactylum tricornutum result in nonphotochemical fluorescence quenching. D Eisenstadt, et al, 2008. Environmental Microbiology
        • Characterization of photosystem II in salt-stressed cyanobacterial Spirulina platensis cells. H Gong, et al, 2008. Biochimica et Biophysica Acta
        • The cyanobacterial homologue of HCF136/YCF48 is a component of an early photosystem II assembly complex and is important for both the efficient assembly and Repair of Photosystem II in Synechocystis sp. PCC 6803*. J Komenda, et al, 2008. Journal of Biological chemistry.
        • Early detection of bean infection by Pseudomonas syringae in asymptomatic leaf areas using chlorophyll fluorescence imaging. L Rodríguez-Moreno, et al, 2008. Photosynthesis research
        • Effects of heat stress on PSII photochemistry in a cyanobacterium Spirulina platensis. B Zhao, et al, 2008. Plant Science
        • The effects of simultaneous RNAi suppression of PsbO and PsbP protein expression in photosystem II of Arabidopsis. X Yi, et al, 2008. Photosynthesis research
        • Functional analysis of photosystem II in a PsbO-1-deficient mutant in Arabidopsis thaliana. H Liu, et al, 2007. Biochemistry
        • Efficiency and role of loss processes in lightdriven water oxidation by PSII. M Grabolle, et al, 2007. Physiologia plantarum
        • Changes of Photosystem II Electron Transport in the Chlorophylldeficient Oilseed Rape Mutant Studied by Chlorophyll Fluorescence and Thermoluminescence. JW Guo, et al, 2007. Journal of Integrative Plant Biology
        • The exposed N-terminal tail of the D1 subunit is required for rapid D1 degradation during photosystem II repair in Synechocystis sp PCC 6803. J Komenda, et al, 2007. The Plant Cell
        • The chlorophyll a fluorescence induction pattern in chloroplasts upon repetitive single turnover excitations: accumulation and function of QB-nonreducing centers. W Vredenberg, et al, 2006. Biochimica et Biophysica Acta
        • The polyphasic chlorophyll a fluorescence rise measured under high intensity of exciting light. D Lazár , 2006. Functional Plant Biology
        • The synechocystis sp PCC 6803 oxa1 homolog is essential for membrane integration of reaction center precursor protein pD1. F Ossenbühl, et al, 2006. The Plant Cell
        • Sucrose and glycerol effects on photosystem II. KM Halverson, et al, 2003. Biophysical journal
        • Copper-induced inhibition of photosynthesis: limiting steps of in vivo copper chlorophyll formation in Scenedesmus quadricauda. H Küpper, et al, 2003. Functional Plant Biology
        • Heavy metalinduced inhibition of photosynthesis: targets of in vivo heavy metal chlorophyll formation1. h küpper, et al, 2002. journal of Phycology
        • Experimental and theoretical studies on the excess capacity of Photosystem II. R Kaňa, et al, 2002. Photosynthesis research
        • Nitrogen deprivation strongly affects Photosystem II but not phycoerythrin level in the divinyl-chlorophyll b-containing cyanobacterium Prochlorococcus marinus. C Steglich, et al, 2001. Biochimica et Biophysica Acta
        • Integrity and activity of photosystem 2 complexes isolated from the thermophilic cyanobacterium Synechococcus elongatus using various detergents. E Šetlíková, et al, 1999. Photosynthetica
        • The PsbY protein is not essential for oxygenic photosynthesis in the cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803. M Meetam, et al, 1999. Plant physiology
        • Nonphotochemical reduction of the plastoquinone pool in sunflower leaves originates from chlororespiration. TS Feild, et al, 1998. Plant physiology

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